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NEWSag尊龙凯时固定液的特性、应用与配制指南
来源:甘伯芝 日期:2025-02-16乙醇,又称为酒精,具有沉淀白蛋白、球蛋白和核蛋白的功能,但后者易溶于水,因此使用酒精固定的标本在细胞核染色方面表现欠佳。酒精能够溶解脂肪和类脂体,因此不适合用于脂肪的固定。它能够沉淀肝糖,但在水中仍然可溶,因此肝糖经酒精固定后应当避免在低于70%的酒精中保存。单独使用时,酒精的浓度需在95%至100%之间。无水乙醇渗透性较差,且会导致组织收缩,混合使用时与醋酸、氯仿等增强其穿透能力。除了固定,酒精还具有硬化和脱水的作用,固定后的组织可存于70%的酒精中,广泛应用于制片过程中。由于无水乙醇易挥发且吸湿,瓶盖应严密关闭,建议在瓶中加入少量无水硫酸铜粉末以去除水分。请注意,酒精是还原剂,不可与重铬酸钾和锇酸等氧化剂共同使用。
甲醛作为气体溶于水时形成甲醛水溶液或福尔马林,常用浓度为10%的福尔马林(实为4%甲醛)。其制备方法为将10ml市售甲醛与90ml蒸馏水混合。虽然甲醛无法沉淀白蛋白和核蛋白,但可与蛋白质结合。此固定液广泛应用、使用简单,具备较强穿透力、均匀固定、组织收缩小以及适当硬度,非常适合一般器官组织的固定与保存,尤其对脂肪和神经组织的效果显著。对于病理组织的制片和大体积标本的保存更为合适。一般需固定24小时以上,随后可逐步转入50%酒精进行脱水。甲醛为强还原剂,不应与铬酸、重铬酸钾和锇酸等氧化剂混合,且因易被氧化成甲酸,其混合固定液如海利氏液需临用前加入。为了应对长期储存带来的多聚甲醛问题,可以加入少量醋酸钙、碳酸镁或大理石作为中和剂。配制10%中性甲醛溶液的方法为:将40%甲醛100ml、蒸馏水900ml,以及磷酸二氢钠和磷酸氢二钠配置。
醋酸在低温下呈冰状,因此被称为冰醋酸,在17℃融化后可与水和乙醇相混合。使用浓度为0.3%至5%,能有效沉淀核蛋白,对染色质固定效果良好,且可近似保持染色体于活体状态,常用于染色体的固定液中。由于醋酸渗透力强,可以使组织膨胀并与其他药剂配合使用,减轻其他固定剂的组织收缩作用。然而,醋酸会破坏线粒体和高尔基体,所以在进行这些细胞结构的固定时需避免使用。
ku味酸是一种强酸,呈黄色结晶,溶于水、乙醇、苯等溶剂。它具有自燃和爆炸的潜在危险,因此需要保存湿润。一般采用饱和水溶液,能有效沉淀蛋白质,对胞质固定较为优越。不过,其渗透速度较慢且会导致组织强烈收缩,通常与醋酸等药剂合用。固定后组织会呈现黄色,但对染色影响不大。
重铬酸钾是一种呈橙红色的结晶,具有毒性且为强氧化剂,不应与酒精混合。其渗透力强,能将蛋白质变为不溶性,保持细胞质结构与活体状态相似,适合用于线粒体和高尔基复合体的固定,但需与其他固定液如甲醛配合使用。固定后的组织需经流水冲洗12至24小时。
铬酸是一种强氧化剂和弱酸,极易潮解,最佳保存形式为1%的水溶液。其为优秀的沉淀剂,固定肝糖效果显著,能使肝糖不溶于水,适用于线粒体和高尔基复合体的固定。铬酸的渗透力较低,不会导致组织收缩。固定后需用流水冲洗超过12小时,否则可能造成沉淀,影响染色。
氯化汞,又称升汞,是一种极毒的药物,对黏膜有腐蚀性,使用时须格外小心。它能沉淀所有蛋白质,促使蛋白质变性为水不溶性,对组织固定效果显著,并有助于线粒体和高尔基体固定。因其穿透力较弱且收缩力较强,常与醋酸、甲醛等混合使用。固定后的组织通常需要用碘酒处理去除沉淀物。
四氧化锇或锇酸是一种强氧化剂,固定脂肪的最佳选择。其渗透速度缓慢,但能均匀固定蛋白质,并保留细胞形态,不会引起细胞收缩,特别适用于线粒体和高尔基复合器的固定。该固定液的处理需谨慎,以避免对眼睛和呼吸道的伤害。锇酸固定的切片在染色前需漂白,以确保颜色的一致性。
总的来说,各种固定液各有优缺点。酒精适用于肝糖的固定,但不适合脂肪。锇酸能固定脂肪,而氯化汞对蛋白质的固定效果良好,冰醋酸则适合核蛋白。为了获得最佳固定效果,可以根据需要组合不同的固定液。了解这些药品的性质是确保成功实验的关键。选择合适的固定液时,可以参考制片专业书籍,以确保选用的固定液能满足实验目的并进行适当的预处理和冲洗。
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